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CAPES/Qualis: B2
O laboratório nas doenças sistêmicas auto-imunes da célula le à célula HEp-2: uma jornada de 50 anos revelando auto-anticorpos
The laboratory in the systemic autoimunne diseases from the le cell to HEp-2 lineage: a journey through 50 years of autoantibodies discovery
Raquel Monteiro de Castro Lara1; Suzane Pretti Figueiredo Neves2
1. Médica Residente de Patologia Clínica/Medicina Laboratorial do HC-UFMG
2. Professora Adjunta do Departamento de Propedêutica Complementar da Faculdade de Medicina da UFMG. Coordenadora do Setor de Soro-imunologia do Serviço de Medicina Laboratorial do HC-UFMG
Suzane Pretti Figueiredo Neves
Avenida Alfredo Balena, 190 - 6º andar Bairro Santa Efigênia
Belo Horizonte - MG
E-mail: suzane@medicina.ufmg.br
Data de Submissão: 20/02/04
Data de Aprovação: 02/08/04
Departamento de Propedêutica Complementar da Faculdade de Medicina da UFMG
Resumo
O termo "anticorpos antinucleares" é usado para designar um grupo de auto-anticorpos contra diversos componentes celulares, cuja produção é considerada característica das doenças sistêmicas auto-imunes. Sua detecção tem sido a principal ferramenta de auxílio no diagnóstico de tais afecções. Este artigo apresenta uma revisão histórica sobre a pesquisa de anticorpos antinucleares: a descoberta da célula LE, o método tradicional de FAN por imunofluorescência indireta e o rastreamento de auto-anticorpos por imunoensaio enzimático.
Palavras-chave: Técnicas e procedimentos de laboratório / história; Anticorpos antinucleares; História da Medicina
INTRODUÇÃO
O diagnóstico das doenças reumatológicas auto-imunes é considerado complexo devido ao seu pleomorfismo clínico. Assim, desde que estas afecções foram reconhecidas, há necessidade de exames complementares, capazes de ajudar na diferenciação de fenômenos auto-imunes irrelevantes de doenças auto-imunes e, em alguns casos, diferenciar uma doença de outra1,2.
Os anticorpos antinucleares (ANA) são um grupo diversificado de auto-anticorpos que reagem com componentes celulares, cuja produção aumentada é considerada característica das doenças auto-imunes sistêmicas, incluindo Lúpus Eritematoso Sistêmico (LES), Síndrome de Sjögren (SS), Artrite Reumatóide (AR), Esclerose Sistêmica Progressiva, Polimiosite e Doença Mista do Tecido Conjuntivo (DMTC)3.
Este artigo revisa a propedêutica laboratorial disponível para detecção dos ANAs, com enfoque na metodologia, indicando as vantagens e limitações de cada técnica e fornecendo informações úteis para uma abordagem mais racional do paciente com suspeita de doenças auto-imunes sistêmicas.
A CÉLULA LE
A observação da célula LE (Lupus Erythematousus Cell) por Hargraves, Richmond e Morton4, em 1948, deu-se em um exame microscópico de esfregaço de medula óssea de um paciente com lúpus eritematoso sistêmico, que foi acidentalmente incubada. Estes autores observaram um neutrófilo contendo uma inclusão citoplasmática grande, arredondada, homogênea e levemente acidófila, que deslocava o núcleo do polimorfonuclear para a periferia (Figura 1).
A partir desta descoberta, a célula LE foi considerada um marcador do LES e a "Pesquisa de Células LE no sangue periférico" foi o primeiro método de detecção de anticorpos antinucleares. O teste, trabalhoso e artesanal, procurava imitar in vitro as circunstâncias em que a célula LE foi vista pela primeira vez. Consistia na adição de pérolas de vidro a um tubo de sangue anticoagulado que era agitado repetidamente, de modo a danificar algumas células, liberando o núcleo e outros fragmentos nucleares. Acreditava-se que, durante a incubação, auto-anticorpos - anti-DNP (desoxiribonucleoproteína) - contidos no soro, opsonizariam núcleos celulares que, posteriormente, seriam fagocitados por leucócitos polimorfonucleares, formando as células LE vistas nos esfregaços corados com Giemsa2. Entretanto, apenas 30% dos pacientes lúpicos apresentavam pesquisa de células LE positiva. Ainda assim, por ser o único exame laboratorial disponível e apresentar boa especificidade, a presença destas células no sangue periférico foi incluída entre os critérios do American College of Rheumatology para diagnóstico de LES, em 19825.
Baseado no suposto mecanismo de formação desta célula, por muitos anos prevaleceu o dogma de que autoanticorpos eram reativos apenas no meio extracelular e que as lesões teciduais observadas seriam resultantes da formação de imunocomplexos e posterior ativação do complemento. Mais recentemente, demonstrou-se que os anticorpos antinucleares são capazes de penetrar, reagir e alterar funções de células vivas6. O mecanismo básico do fenômeno da célula LE é, na verdade, a fagocitose de restos celulares originados de apoptose induzida pela internalização de anticorpos antinucleares, mais especificamente do antidsDNA, abrindo novas possibilidades para o entendimento dos processos imunopatológicos e novas perspectivas de atuação fisiológica da resposta humoral7.
Apesar do grande valor histórico da célula LE e do papel fundamental representado por ela na elucidação da patogenia das doenças auto-imunes, sua procura em sangue periférico é considerada hoje ultrapassada, tendo deixado de figurar entre os critérios diagnósticos de LES, desde 19978. Entretanto, quando encontradas in vivo em derrames cavitários, são pistas diagnósticas valiosas e de grande especificidade.
O FAN
Em 1957, com o desenvolvimento de técnicas de imunofluorescência indireta (IFI), surgia o exame conhecido como FAN (fator antinuclear) para identificação de anticorpos antinucleares9. Mais sensível e de execução mais fácil que a pesquisa de células LE, em 1982 o FAN passou a fazer parte dos critérios revisados do American College of Rheumatology, como um dos onze critérios diagnósticos de LES5.
A técnica consiste na incubação de diluições seriadas do soro do paciente em lâmina contendo células animais como substrato. Estando presentes, os anticorpos reagem com os antígenos celulares, formando um complexo antígeno-anticorpo. Anti-imunoglobulina humana conjugada com fluoresceína é adicionada e, posteriormente, a lâmina é examinada em um microscópio de luz UV. Assim, dependendo do(s) anticorpos(s) existente(s), vários padrões fluorescentes podem ser observados2.
O teste utilizava, inicialmente, substratos de células animais: in prints ou cortes histológicos de rim ou fígado de roedores. Atualmente, recomenda-se o uso de células tumorais da linhagem HEp-2, originadas de tumores epiteliais de laringe10,11,13. Entre as vantagens que estas células oferecem está o fato de que se trata de antígenos humanos e não de animais. Apresenta, ainda, maior sensibilidade devido às suas características neoplásicas, tais como a grande relação núcleo/citoplasma, presença de vários nucléolos e citoplasma rico em fibrilas e organelas. Além disso, as células HEp-2 podem ser visualizadas em todas as fases da divisão celular, aumentando ainda mais o número de antígenos expostos.
Hoje, a pesquisa de auto-anticorpos em células HEp2 é capaz de detectar anticorpos circulantes dirigidos contra os mais variados constituintes celulares: antígenos nucleares, nucleolares, citoplasmáticos e do aparelho mitótico10-13. Devido à variedade de antígenos detectáveis por este teste, recomenda-se aos laboratórios alterar sua denominação, deixando claras as reais potencialidades do método12. (Figura 2). Recomenda-se, também, que o laudo do exame contemple todas as possíveis reatividades observadas nos diversos compartimentos celulares, bem como uma breve interpretação dos achados.
O Uso Clínico do FAN
A principal indicação clínica para a pesquisa do FAN continua sendo no diagnóstico de LES. Praticamente, todos os pacientes com LES têm um FAN positivo quando são utilizadas células HEp-2, o que se traduz em sensibilidade de 93% a 100%. Portanto, um FAN negativo virtualmente afasta a possibilidade da doença. Entretanto, a especificidade do teste é baixa, estimada em 57%, pois o teste pode ser positivo em uma infinidade de situações como infecções viróticas (inclusive por HIV), hanseníase, endocardite bacteriana, hepatites, alergias e neoplasias, principalmente linfoma. Pode ser positivo, também, em pacientes com implantes de silicone e até mesmo em indivíduos sadios2,14,16. A explicação para a presença de autoanticorpos em tantas condições é que a maioria deles não é específica para doenças auto-imunes e podem ser produzidos como resultado da ativação policlonal de linfócitos B em situações de grande estimulação antigênica16,17.
Reações falso-negativas podem ocorrer em alguns pacientes com anticorpos anti-SS-A/Ro isolado. Este antígeno está presente em pequenas quantidades na célula HEp-2 intacta e, durante a fixação na lâmina, pode ser perdido, o que pode levar a resultados falso-negativos em até 26% das amostras positivas para este anticorpo, quando pesquisado por técnicas específicas15. A Tabela 1 mostra valores de sensibilidade e especificidade do FAN nas principais doenças reumatológicas auto-imunes.
No que diz respeito à utilidade clínica de um teste, é extremamente importante o conhecimento dos valores preditivos positivo (VPP) e negativo (VPN). O valor preditivo negativo do FAN para LES é extremamente elevado, ou seja, diante de um FAN negativo, a possibilidade de não haver a doença é de virtualmente 100%. O valor preditivo positivo por sua vez, é bastante baixo, em torno de 11%. Dessa forma, ao analisar um FAN positivo, o clínico deve ter em mente o baixo poder deste teste em indicar a presença desta doença.
Um problema muito expressivo no dia-a-dia do laboratório é a positividade do teste sem que haja correlação clínica. Em soro puro ou em baixas diluições, virtualmente toda a população apresenta reatividade na pesquisa de FAN; daí a necessidade de um valor de corte adequado. Mudanças na distribuição dos títulos dos auto-anticorpos na população são idade e sexo dependente. Craig et al. mostraram que 95% da população masculina e 95% das mulheres com menos de 20 anos apresentam reatividade em títulos menores ou iguais a 1:32. Entre mulheres acima de 40 anos, este título desloca-se para 1:128. Assim, o valor de 1:40, freqüentemente usado como valor de corte para positividade, não distingue bem doença de saúde18. Para minimizar essa situação, vários laboratórios adotam um valor de corte de 1:8010,11. Ainda assim, até 13,3% da população sadia pode ter um teste positivo12,19. Tan et al., após estudo multicêntrico sobre a prevalência e títulos de FAN positivo na população "sadia", recomendam a liberação do resultado na diluição de 1:40 e 1:160, acompanhado da informação sobre o percentual de falsos-positivos encontrados em cada nível de corte. Geralmente, quanto mais alto o título, mais significativo o resultado do exame, especialmente em pacientes jovens17. A Figura 3 ilustra a dispersão de títulos do FAN em algumas condições em que este exame pode estar positivo.
Em contrapartida, em situações de forte suspeita clínica, sem que haja definição quanto ao diagnóstico, pode ser útil repetir o teste no futuro, uma vez que as doenças reumatológicas são de natureza espectral2. Dijkstra et al. demonstraram, em estudo prospectivo, que 58% dos pacientes com FAN positivo, que não receberam imediatamente diagnóstico de doença reumática, desenvolveram colagenoses em um período de cinco anos de seguimento. Destes, 75% receberam o diagnóstico nos dois anos seguintes, justificando a recomendação de acompanhamento mínimo por este período, desde que haja suspeita clínica de doença21.
Outro problema de grande importância é a variação intra e inter-laboratorial do teste, devido à sua interpretação "examinador dependente" e à falta de padronização metodológica20. Em agosto de 2000, o I Consenso Brasileiro de FAN-HEp2, realizado em Goiânia, uniformizou a diversificada nomenclatura para descrição de um mesmo aspecto morfológico, eliminando uma grande fonte de confusão na interpretação dos resultados. Foi também proposto o valor de corte de 1:80 ou 1:160, conforme o microscópio utilizado10,11. Com o II Consenso Brasileiro de FAN-HEp2, em 2002, foram organizadas as associações existentes entre os padrões de fluorescência e doenças reumatológicas auto-imunes, visando oferecer ao clínico correlações atualizadas entre a presença do(s) anticorpo(s) e doença12.
PADRÕES DE FLUORESCÊNCIA EM CÉLULAS HEp-2
Os padrões observados à microscopia sugerem o tipo de anticorpo predominante no soro e a natureza do antígeno com o qual este anticorpo reage (Tabela 2). Alguns padrões de fluorescência são relativamente inespecíficos, podendo corresponder a anticorpos distintos. Alguns achados, entretanto, são correlacionados com situações clínicas especificas. No LES, a detecção dos anticorpos anti-dsDNA e anti-Sm é utilizada como um dos critérios diagnósticos. Sua presença no soro é sugerida pelos padrões de fluorescência nuclear homogêneo e pontilhado grosso, respectivamente. O anticorpo anti-topoisomerase-I corrobora o diagnóstico de esclerose sistêmica progressiva e sua pesquisa é recomendável quando ocorre padrão de imunofluorescência misto, do tipo nuclear e nucleolar pontilhado (Tabela 2). O padrão centromérico, por sua vez, corresponde ao anticorpo anti-centrômero e sugere o diagnóstico de esclerose sistêmica do tipo CREST, de melhor prognóstico. Este padrão é tão específico que dispensa a pesquisa do anticorpo por outras técnicas. Um padrão pontilhado fino é comumente relacionado à presença de anticorpos anti-SSA-Ro e SSB-La, que podem estar presentes no LES e na Síndrome de Sjögren. O encontro de anticorpos anti-histonas, correspondente ao padrão nuclear homogêneo, na ausência de outros anticorpos, é encontrado no lúpus induzido por drogas3.
Assim, o FAN-HEp-2 é um importante método de triagem, pois, possibilitando o conhecimento do(s) anticorpo(s) provavelmente envolvido(s), orienta o próximo passo na investigação e os pedidos de exames laboratoriais subseqüentes, contribuindo para a viabilidade econômica do processo diagnóstico10,11,22.
A dosagem dos anticorpos específicos, quando indicada, pode ser feita por diversas metodologias, entre elas a imunodifusão dupla Outcherlony, hemaglutinação, enzimaimunoensaio (EIA) ou imunoblot2. A Figura 4 apresenta um fluxograma para orientação do clínico na conduta laboratorial diante de um paciente com suspeita clínica de doença reumatológica sistêmica auto-imune16.
A PESQUISA DE ANTICORPOS ANTINUCLEARES POR IMUNOENSAIO ENZIMÁTICO
Uma metodologia que vem ganhando cada vez mais espaço no mercado internacional é a pesquisa do FAN por imunoensaio enzimático (EIA)23. O teste consiste na utilização de um conjunto de antígenos celulares adsorvidos na superfície interna de uma placa de poliestireno que servirá como substrato para a captura dos anticorpos porventura presentes na amostra do paciente. Estes se ligam ao(s) antígeno(s) na placa e o imunocomplexo resultante é revelado pela adição de anti-imunoglobulina humana marcada com enzima que, ao consumir um substrato específico, gera cor de intensidade proporcional à quantidade de anticorpos. O produto corado é lido por espectofotometria e os resultados são expressos em unidades numéricas, calculadas pela comparação com uma curva padrão. Esta técnica é útil, pois é passível de automação e fornece resultados semi-quantitativos independentes da habilidade do observador, dispensando a necessidade de mão-de-obra especializada24-27. Entretanto, não fornece indicação quanto à especificidade do anticorpo envolvido no processo, o que constitui sua principal limitação28,29 Há, ainda, a necessidade de valores de corte adequados, os quais ainda não estão bem estabelecidos.
A utilização destes imunoensaios, mais sensíveis que a imunofluorescência, tem trazido problemas na interpretação de resultados antes considerados específicos para certas condições clínicas. Medeiros demonstrou positividade para anti-Sm, considerado marcador de LES, em 2,2% dos pacientes com outras doenças reumáticas e 2,3% do grupo controle. Foi detectado anti-Scl70 em 3,6% e anti-Jo-1 em 2,5% dos pacientes reumatológicos sem diagnóstico respectivamente, de esclerose sistêmica e polimiosite30.
Já existem vários kits comerciais no mercado e diversos trabalhos científicos avaliando os seus desempenhos em comparação à técnica de imunofluorescência em células HEp-228,31,32. Tais estudos comparativos mostram que a sensibilidade e especificidade variam significativamente entre os imunoensaios enzimáticos, geralmente na dependência do substrato utilizado33. O emprego de extrato de núcleo das células HEp-2 tem a vantagem de capturar todos os anticorpos anti-celulares potenciais. Por outro lado, quando é utilizada uma mistura de antígenos sintetizados por técnicas recombinantes, a sensibilidade do kit deve ser confirmada pelo laboratório, pois a ausência de algum antígeno importante na preparação antigênica pode levar a maior taxa de resultados falsos negativos29.
CONSIDERAÇÕES FINAIS
A pesquisa de auto-anticorpos que reagem com constituintes celulares constitui uma ferramenta essencial para o diagnóstico das doenças auto-imunes. Seu valor depende da especificidade e sensibilidade intrínsecas do teste, mas, principalmente, de seu valores preditivos, diretamente relacionados à prevalência da doença na população testada. Suarez-Almazor et al. constataram valores preditivos positivos diferentes entre clínicos gerais e reumatologistas. Entre estes últimos, cujos pacientes apresentavam maior prevalência de doença reumática, o valor preditivo positivo do FAN foi significativamente maior. Isso se deve, em grande parte, à utilização indiscriminada do exame pelos clínicos34. Pacientes com, por exemplo, doença extra-articular isolada ou sintomas constitucionais não específicos, como fadiga, apresentam poucas chances de ter doença reumática associada com FAN positivo. Uma seleção mais criteriosa dos pacientes seria capaz de melhorar o valor preditivo positivo do teste. Por outro lado, o FAN tem um excelente valor preditivo negativo - praticamente 100% - de modo que, em face de um teste negativo, pode ser necessário reconsiderar a suspeita diagnóstica34,35.
Dessa forma, o exame bem indicado, sustentado por uma suspeita clínica consistente e que, por sua vez, é bem interpretado pelo médico assistente, contribuirá não só para o acerto do diagnóstico, como também para a orientação da propedêutica subseqüente, diminuindo o volume de exames, reduzindo custo e trabalho, encaminhamentos desnecessários e terapia inapropriada.
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1- Kavanaugh AF, Tomar R, Reveille J, Solomon DH, Homburger HA. Guidelines for clinical use of the antinuclear antibody test and tests for specific autoantibodies to nuclear antigens. Arch Pathol Lab Med 2000;124:71-81.
2- Wanchu A. Antinuclear Antibodies: Clinical Applications. J Postgrad Med 2000;46:144-8.
3- Tan EM. Autoantibodies in diagnosis and in identifying autoantigens. The Immunologist 1999;7:85-92.
4- Hargraves M, Richmod H, Morton R. Presentation of two bone marrow components, the tart cell and the LE cell. Mayo Clin Proc 1948;27:25-8.
5- Tan EM, Cohen AS, Fries JF, Masi AT, McShane DJ, Rothfield NF et al. The 1982 revised criteria for the classification of systemic lupus erythematosus (SLE). Arthritis Rheum 1982;25:1271-7.
6- Ruiz-Argüelles A. Novel facts about an old marker: the LE cell. Scand J Clin Lab Invest 2001; 61(Suppl 235):31-7.
7- Schmidt-Acevedo S, Pérez-Romano B, Ruiz-Argüelles A. 'LE cells' result from phagocytosis of apoptotic bodies induced by antinuclear antibodies. J Autoimmun 2000;15:15-20.
8- Hochberg MC. Updating the American College of Rheumatology revised criteria for the classification of systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum 1997;40:1725.
9- Friou GJ. Clinical application of lupus serum nucleoprotein reaction using fluorescein antibody technique. J Clin Invest 1957;36:890-5.
10- Pfrimer IAH, Franscescantônio PL, von Mühlen CA. I Consenso Nacional para Padronização dos Laudos de FAN Hep-2. Rev Bras Reumatol 2001;41:267-73.
11- Pfrimer IAH, Franscescantônio PL, von Mühlen CA. I Consenso Nacional para Padronização dos Laudos de FAN Hep-2. J Bras Patol Med Labor 2002;38:207-16.
12- Dellavance Júnior AG, Cintra AFU. II Consenso Brasileiro de fator antinuclear em células Hep-2: definições para a padronização da pesquisa de auto-anticorpos contra constituintes do núcleo (FAN Hep-2), nucléolo, citoplasma e aparelho mitótico. Rev Bras Reumatol 2003;43:129-40.
13- Andrade LEC. Como valorizar os resultados de teste de FAN (anticorpos antinúcleo) e suas diferentes metodologias. Sinop Reumatol 2002;4:3-9.
14- Solomon DH, Kavanaugh AJ, Schur PH, American College of Rheumatolgy Ad Hoc Committee on Immunologic Testing Guidelines. Evidence-based guidelines for the use of immunologic tests: antinuclear antibody testing. Arthritis Rheum 2002;47:434-44.
15- Blomberg S, Ronnblom L, Wallgren AC, Nilsson B, Karlsson-Parra A. Anti-SSA/Ro antibody determination by enzyme-linked immunosorbent assay as a supplement to standard immunofluorescence in antinuclear antibody screening. Scand J Immunol 2000;51:612-7.
16- Hansen KE, Arnason J, Bridges AJ. Autoantibodies and common viral illnesses. Sem Arthritis Rheum 1998;27:263-71.
17- Egner W. The use of laboratory tests in de diagnosis of SLE. J Clin Pathol 2000;55:424-32.
18- Craig WY, Ledue TB, Johnson AM, Ritchie RF. The distribution of antinuclear antibody titers in "normal" children and adults. J Rheumatol 1999;26:914-9.
19- Tan EM. Range of antinuclear antibodies in "healthy" individuals. Arthritis Rheum 1997;40:1601-11.
20- Barland P, Lipstein E. Selection and use of laboratoy tests in the rheumatic diseases. Am J Med 1996;100:16S-23S.
21- Dijkstra S, Nieuwenhuys EJ, Swaak AJG. The prognosis and outcome of pacientes reffered to an outpacient clinica for rheumatic diseases characterized by the presence of anti-nuclear antibodies (ANA). Scand J Rheumatol 1999;28:33-7.
22- Solomon DH, Shmerling RH, Schur PH, Lew R, Fiskio J, Bates DW. A computer based intervention to reduce unnecessary serologic testing. J Rheumatol 1999;26:2578-84.
23- Kumagai S, Hayashi N. Immnunofluorescence - still the 'gold standard' in ANA testing? Scand J Clin Lab Invest 2001;61:77-83.
24- Bayer PM, Fabian B, Hubl W. Immunofluorescence assays (IFA) and enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) in autoimmune disease diagnostics - technique, benefits, limitations and applications. Scand J Clin Lab Invest 2001;61:68-76.
25- Lehmann HP, Fuhling I, Ott C, Hudepohl B, Haass M. Hep-2 ANA EIA: a new fully automated assay for the screening of antinuclear antibodies. Isr Med Assoc J 2000;2:646-8.
26- Rondeel JM, van Gelder W, van der Leeden H, Dinkelaar RB. Different strategies in the laboratory diagnosis of autoimmune disease: immunofluorescence, enzyme-linked immunosorbent assay or both? Ann Clin Biochem 1999;36:189-95.
27- Rondeel JM. Immunofluorescence versus ELISA for the detection of antinuclear antigens. Expert Rev Mol Diagn 2002;2:226-32.
28- Homburger HA, Cahen YD, Griffiths J, Jacob GL. Detection of Antinuclear Antibodies: comparative evaluation of enzyme immunoassay and indirect immunofluorescence methods. Arch Pathol Lab Med 1998;122:993-9.
29- Emlen W, O'Neill L. Clinical Significance of antinuclear antibodies - comparison of detection with immunofluorescence and enzyme-linked immunosorbent assays. Arthritis Rheum 1997;40:1612-8.
30- Medeiros KX. Comparação de diferentes métodos laboratoriais para a identificação de anticorpos antinucleares e avaliação do desempenho diagnóstico dos mesmos nas doenças reumáticas auto-imunes [dissertação]. São Paulo, SP: Universidade Federal de São Paulo; 1997.
31- Tan EM. A critical evaluation of enzyme immunoassay kits for detection of antinuclear autoantibodies of defined specificities. I. Precision, sensitivity, and specificity. Arthritis Rheum 1999;42:455-64.
32- Tan EM. A critical evaluation of enzyme immunoassay kits for detection of antinuclear autoantibodies of defined specificities. II potencial for quantitation of antibody content. J Rheumatol 2002;29:68-74.
33- Kern P, Kron M, Hiesche K. Measurement of Antinuclear Antibodies: Assessment of Different Test Systems. Clin Diagn Lab Immunol 2000;7:72-8.
34- Suarez-Almazor ME, Gonzalez-Lopez L, Gamez-Nava JI, Belseck E, Kendall CJ, Davis P. Utilization and predictive value of laboratory tests in patients referred to rheumatologists by primary care physicians. J Rheumatol 1998;25:1980-5.
35- Slater CA, Davis RB, Shmerling RH. Antinuclear antibody testing - A study of clinical utility. Arch Intern Med 1996;156:1421-5.
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